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镍的生殖毒性研究进展

摘要撰写人 : TsingHua
浏览次数 : 9  词语: 300   出版日期: 十二月 30, 1996
镍的生殖毒性研究进展广西职业病防治研究所(南宁市河堤路,530021)梁华广西医科大学劳 动卫生教研室胡万达镍(Nickel)是一种用途很广的金属材料,也是人或动物所需的一种营 养微量元素。Ni2+缺乏可以引起生长抑制,肝功能异常等表现,若母体Ni2+缺乏还可导致 子代死亡率增加[1]。然而,过量Ni2+摄入亦可造成机体损害。镍也是一种比较明确的致突 变剂和致癌剂[2,3]。近年来,一些研究涉及了镍的生殖毒性问题,已引起人们关注。本文仅 就镍的生殖毒性研究近况概述如下。一、镍经胎盘和乳汁运转许多化学物质能够经胎盘运转而与胎 儿接触,对发育中的胚胎产生毒作用,干挠器官的形成和胎儿的发育。Szakmary等对怀孕 7~14天的CFY大鼠连续8天作3mg/kg的NiCl2灌胃,然后测定机体镍含量。结果 发现,胎血和羊水均含有镍,其含量与给予孕鼠的镍剂量和孕鼠血镍浓度成正比。NiCl2透过 胎盘不影响血液动力学和器官循环参数[4]。分别给予妊娠8天和18天的大鼠肌注63NiC l212mg/kg,24小时后作放射自显影检查,表明镍已进入胎儿组织[5]。作10天龄 大鼠胚胎与63Ni2+体外培养,26小时后,胚胎和卵黄囊均可测定出63Ni2+[6]。 Dostal等发现[7],大鼠血浆镍可以分布至乳腺并随乳汁分泌。一次注射10、50和1 00μmol/kg的NiCl2,4小时后大鼠血镍和乳汁镍浓度升高,乳汁/血浆镍浓度比为 0.02。血镍浓度在注射后4小时达到高峰,乳汁镍浓度在12小时达到高峰,并维持高峰至2 4小时。每天注射50和100μmol/kg的NiCl2连续4天,乳汁/血浆镍浓度比提高 到0.1。乳鼠解剖见肝重量明显低于对照组。二、镍对睾丸和下丘脑一垂体一性腺轴作用1.睾 丸、精子。以1、5和15mg/kg的NiCl2对昆明种雄性小鼠作腹腔注射,35天后检查 发现,5和15mg/kg组小鼠精子数量减少,精子活动率降低。三个组精子畸形率均明显高于 对照组,精子畸形95%表现为头部畸形。三个组小鼠睾丸初级精母细胞性染色体早熟分离均非常 显著高于对照组,常染色体早熟分离改变不明显[8]。Lindemann等以0.66mmo l/L的NiSO4与公牛精子作体外培养,见精子活力随培养时间延长而逐渐减弱,活动节律不 对称,最终精子活力完全丧失。但活力丧失的精子其鞭毛尚保持有不对称的对机械刺激反应。显然 ,Ni2+对精子能量代谢过程产生抑制,并损伤精子鞭毛轴丝[9]。以10和20mg/kg NiCl2连续5天作小鼠腹腔注射后,取睾丸作病理组织学及超微结构检查,见10mg/kg 组睾丸曲细精管上皮中的精原细胞、精母细胞、以及各发育阶段的生精细胞有大小不等的空泡。曲 细精管内支持细胞胞浆中溶酶体数量增多,线粒体嵴肿胀。精母细胞核固缩,线粒体空化变性。精 子细胞顶体发育不良。精原细胞核膜不清,核固缩。20mg/kg组曲细精管生精上皮弥漫性空 化,支持细胞胞浆有空泡,精原细胞皱缩、空化,精母细胞代偿性增大。超微结构表现除与10m g/kg组相同外,尚有支持细胞线粒体空化;精母细胞核质空化,线粒体数量减少;精子细胞顶 体泡发育障碍且颗粒结构不清;部分精子头部顶体形状不规则[8]。然而,姜方旭等对10~1 2周龄的LACA系雄性小鼠,分别作20、30和40mg/kgNiCl2一次腹腔注射,于 注射后12和24小时解剖小鼠,取睾丸进行酶组织化学分析。虽然40mg/kg组小鼠已有明 显的中毒症状,但各组小鼠睾丸曲细精管各部分(基底小室、围腔小室、晚期精子细胞)和间质细 胞中的DI-I(NADH-黄递酶或Ⅰ型黄递酶),SDH(琥珀酸脱氢酶),Mg2+-AT -Pase(Mg2+-三磷酸腺苷酶),NSE(非特异性酯酶),CO(细胞色素氧化酶), HK(己糖激酶),5’-AMPase(核苷酸酶)水平,均无明显改变[10]。作者认为小 鼠睾丸不是NiCl2毒性的敏感器官。但实验未进行乳酸脱氢酶,葡萄糖-6-磷酸脱氢酶和酸 性磷酸酶活性观察。2.下丘脑-垂体-性腺轴。有关这方面的研究资料不多。Cooper等以 50mmol/LNi2+作大鼠垂体体外培养,发现Ni2+对垂体黄体生成素(LH)和催乳 素(Prl)释放无明显影响[11]。牛长时间摄食含较高浓度Ni2+的饲料,则刺激垂体释 放生长激素、促甲状腺素、黄体生成素、促卵泡激素、促肾上腺皮质激素[1]。镍在一定浓度下 能干挠下丘脑-垂体-性腺轴的正常关系。三、镍的胚胎毒性和致畸胎作用用含亚致死浓度镍的水 饲养水蚤21天,发现其新生雌性水蚤体长明显短于对照组,同一母体的仔水蚤体形大小不一[1 2]。在鸡胚孵化的第0~4天,对气囊一次注射0.02~0.7mg/卵的NiCl2,鸡胚 存活率明显降低,为4~96%;畸形率增高,达22~48%[13]。蟾蜍(Xenopus laevis)胚胎发育期间接触NiCl2,可导致子代(蝌蚪)眼畸形,如视网膜、脉络膜脱 出和囊肿,视网膜色素上皮缺失,虹膜裂开,先天性白内障等[14]。大鼠胚胎神经细胞体外培 养可见,Ni2+对神经细胞的半数分化抑制浓度(ICd50)小于1μg/ml(1mg/L ),半数存活抑制浓度(ICv50)与ICd50比值(v/d)大于6.0,显示体外细胞致 畸活性[15]。用含0.34或0.68mmol/L63NiCl2的血清作10天龄大鼠胚 胎培养,26小时后发现,0.68mmol/L组胎鼠生长迟缓,并有脑、尾畸形[6]。对妊 娠6~8天的大鼠作8~16mg/kgNiCl2肌注,或妊娠期间饮用含NiCl20.01 ~10mg/kg的水,基本不引起胚胎死亡和子代畸形,但子代体形小,且新生鼠死亡率高。对 妊娠第1~11天的小鼠作1~7mg/kgNiCl2腹腔注射,可引起胚胎吸收,胎儿生长缓 慢,并有胎脑、眼、硬腭、骨骼肌畸形。地鼠妊娠8~11天作静脉或腹腔注射Ni(C2H3O 2)2(醋酸镍)或NiCl28~30mg/kg,可引起胚胎死亡或子代发生关节强硬,畸形 足等。认为经腹腔注射Ni2+4mg/kg是最大的致畸剂量[16]。Ni2+致胚胎毒性和 致畸作用研究报道很不一致,小鼠似乎比大鼠敏感。四、镍对人类生殖功能的影响正常人精子与N iSO4体外培养,当Ni2+终浓度为10-4和2×10-4mol时,培养150min, 精子染色体畸变明显增高,分别为15.4%和16.8%;但精子存活率培养前后改变不大。当 2×10-4mol的Ni2+与精子培养时间延长≥360min,或10-3和10-2mo lNi2+与精子培养20min时,则精子存活率明显降低(P<0.05)。人精子和金黄地 鼠卵子与2×10-4mol的Ni2+培养150min之后,再混合孵育2小时,人精子对金 黄地鼠卵子的穿透(受精)率与对照组比较无明显差异。实验表明,10-4mol以上浓度的N i2+能诱发人精子染色体畸变,但Ni2+浓度低于2×10-4mol时,对人精子受精力和 存活率影响不明显。认为Ni2+对人精子的作用主要表现为精子遗传物质的损伤,而对精子的受 精和生存能力无明显作用[17]。Michael等作Ni2+与人精子培养,3小时后检查见 精子活动度为55%,为实验前(70%)的78%,实验前后精子活力变化不大。这可能由于N i2+不影响精子的能量代谢[18]。镍可以穿过人胎盘进入胎儿。已发现妊娠22~43周的 胎儿组织和脐带血中镍浓度与其接触镍的母体水平一致[13]。Chashschin等对镍( NiSO4)精炼厂电解车间232名电解女工(平均尿镍15.6μg/L)和124名电解净 化女工(平均尿镍10.4μg/L)进行了流行病学调查,结果发现这些女工的受孕率为29% ,而非接触组人群为39%。自然流产率为15.9%,高于非接触组人群(8.5%),自然流 产相对危险度为1.8;先兆流产率为17.2%,也高于非接触组人群(7.6%)。镍接触女 工子代畸形率为17%,约为非接触组人群(6%)的3倍。子代全部畸形、心血管畸形和肌肉骨 骼畸形的相对危险度分别为2.9,6.1和1.9,均非常显著高于非接触组人群[19]。用 正常人子宫肌组织分别与终浓度为0.4、0.8、1.6、3.2和6.4mmol/L的Ni Cl2进行体外培养,结果可见,NiCl2明显抑制子宫肌自发收缩的强度和张力,其抑制程度 与Ni2+浓度成正比。Ni2+基本不影响子宫肌收缩频率。Ni2+能明显抑制Ca2+引起 的子宫肌收缩反应,培养15~30min,就降低65~103%(P<0.01)。Ni2+ 还能明显抑制催产素引起的依赖细胞内Ca2+性的子宫肌收缩,仅为正常的55%,但对细胞外 Ca2+性的子宫肌收缩无影响[20]。综上所述,镍对人和动物的生殖毒性作用是可以肯定的 。然而,以往研究对同种动物的观察结果不完全相同,人与动物的生殖功能损害表现也不尽一致。 雄性动物睾丸损害以支持细胞和线粒体改变显著,而人精子此方面影响则不明显。但人和动物精子 染色体均表现出明显的畸变率增加。此外,镍的生殖毒性研究资料尚不全面,还缺乏如下丘脑-垂 体-性腺轴(包括卵巢)损害、性激素改变的观察;对接触镍男工生育力和女工月经、以及其子代 远期生长发育状况等方面的流行病学调查资料仍很缺乏。因此,镍的生殖毒性作用机理尚未完全阐 明,有待深入研究。参考文献[1]冀元棠摘.镍-较新的微量营养元素.国外医学卫生学分册1 986;13(1)40.[2]ZhangQ.Dose-responsestudiesofnickel-inducedmorphologicaltransformationofsytianhamsterem-bryofibroblasts.ToxcolinVitro1988;2(4)303.[3]SundermanFJr.Recentprogr

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